一般情況下，瞬時轉染是將 DNA 導入真核細胞的方式之一。在瞬時轉染中，重組 DNA 導入感染性強的細胞系以獲得目的基因暫時但高水平的表達。

轉染的 DNA 不必整合到宿主染色體，可在比穩定轉染較短時間內（最多一周左右）收獲轉染的細胞，并對溶解產物中目的基因的表達進行檢測。

如果過表達基因用質粒，如果敲降用的是 siRNA(在 microRNA 實驗中，過表達用的是 mimics，敲降用的是 inhibitor)。

通過瞬時轉染，將目的基因敲降或者過表達（gain and loss 實驗），觀察下游靶基因的表達情況，或者細胞表型（phenotype）的變化，例如凋亡，周期，增殖，侵襲，轉移等。那該怎么做呢

lipofectamine2000（轉染試劑）（避光），Opti-MEMI減血清培養基（避光），目的基因的質?；蛘遱iRNA（以siRNA為例），細胞，六孔板，培養基，以及一些細胞實驗所需的普通物品。

1）細胞接種：轉染實驗前天接種細胞，各種細胞的平板密度依據各種細胞的生長率和細胞形狀而定。進行轉染當天細胞密度應達到60%~80%覆蓋。

2）細胞轉染：1.一般六孔板液體每孔在 2ml 左右，不宜太多，或者太少。取兩個 1.5mlEP 管，記為 A 管，B 管，每個 EP 管加入 250ul Opti-MEM I，然后 A 管加入 5-10ul lipofectamine 2000，B 管加入 100pM-200pM 的 siRNA（見買來的 siRNA 說明書），然后靜置 5min，混合在一起，靜置 20min，用 AB 混合液加入到 1.5ml 的無血清培養基 C 內，混勻；

2. 將六孔板里的細胞的液體吸出，用 PBS 清洗兩遍；

3. 將 ABC 混合液 2ml 加入六孔板中；

4.4-6h 后換成正常血清培養基（忌放抗生素），在培養箱內培養；

5.48h 后提取 RNA 或者 72h 提取蛋白，或者 48h 后進行后續相關實驗。